Sentieon
Sentieon 中文手册
Sentieon 中文手册(上册)
Sentieon 中文手册(下册)
Sentieon 软件应用教程
Sentieon | 联合Dell、AMD开发基因组大数据分析加速方案
Sentieon | 应用教程: 利用Sentieon Python API引擎为自研算法加速
Sentieon | 应用教程: 关于读段组的建议
Sentieon | 应用教程: 使用DNAscope对HiFi长读长数据进行胚系变异检测分析
Sentieon | 应用教程: TNscope® 使用机器学习模型进行有匹配正常样本的体细胞变异发现
Sentieon | 应用教程: CCDG使用Sentieon®的功能等效流程
Sentieon | 应用教程: 利用共识功能去除PCR重复
Sentieon | 应用教程: 适用于PacBio HiFi和Oxford Nanopore长读长测序数据的结构变异检测
Sentieon | 应用教程: 使用 Sentieon进行大型基因组重测序分析
Sentieon | 应用教程: 体细胞SNP/Indel变异检测
Sentieon | 应用教程: DNAscope使用机器学习模型进行胚系变异调用
Sentieon | 应用教程: 唯一分子标识符(UMI)
Sentieon | 应用教程: Sentieon分布模式
Sentieon | 应用教程:使用CNVscope进行CNV检测分析
Sentieon发布核心家系(trio)基因分析最佳实践方案
Sentieon推出Segdup-caller:针对片段重复区域的专用精准变异检测工具
Sentieon-cli | DNAscope WES 流程单条命令版本详解
Sentieon | DNAscope 核心家系(trio) WES 分析全流程详解
Sentieon | DNAscope Hybrid长短读长混合分析流程详解及评测
Sentieon | DNAscope LongRead:面向ONT WGS的快速、高精度、低成本变异检测流程
重磅发布|真迈生物联合Sentieon打造SURFSeq 5000 CMS + DNAscope工作流
Sentieon软件版本更新
Sentieon | 发布V202503.01版本
Sentieon | 发布V202503.02版本
Sentieon | 发布V202503.03版本
Sentieon | 发布V202503.04版本
Sentieon软件快速入门指南
Sentieon 软件模块总述
Sentieon 特色流程 - DNAscope
Sentieon | DNAscope Illumina 流程
sentieon | DNAscope Complete Genomics 流程
Sentieon | DNAscope LongRead PacBio 流程
Sentieon | DNAscope Ultima Genomics 流程
Sentieon | DNAscope Element Bio 流程
Sentieon | DNAscope LongRead Nanopore 流程
Sentieon混合分析流程 - DNAscope Hybrid
Sentieon推出混合型短读长和长读长变异检测DNAscope Hybrid流程(上)
Sentieon推出混合型短读长和长读长变异检测DNAscope Hybrid流程(下)
毅硕Sentieon | 泛基因组分析流程详解
Sentieon | 基于Illumina WGS数据的高精度、低成本的泛基因组分析方案
Sentieon | 基于Ultima WGS数据的高精度、低成本的泛基因组分析测评
Sentieon | 泛基因组分析流程详解—CHM13 (T2T) 更新版
Sentieon | DNAscope Pangenome:赋能人类高精度生殖筛查
Sentieon|植物泛基因组分析加速详解
毅硕Sentieon | RNA-seq 变异检测全流程详解
毅硕Sentieon | 物种全基因组(WGS)分析流程
毅硕Sentieon | 植物全基因组(WGS)分析流程
毅硕Sentieon | 小麦(Triticum aestivum)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 水稻(Oryza sativa)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 拟南芥(Arabidopsis thaliana)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 马铃薯(Solanum tuberosum)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 巨桉(Eucalyptus grandis)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 向日葵(Helianthus annuus)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 野草莓(Fragaria vesca)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 银杏(Ginkgo biloba)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 大豆(Glycine max)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 陆地棉(Gossypium hirsutum)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 胡桃(Juglans regia)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 苹果(Malus domestica)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 香蕉(musa acuminata)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 罂粟(Papaver somniferum)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 开心果(Pistacia vera)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 毛果杨(Populus trichocarpa)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 夏栎(Quercus robur)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 蓖麻(Ricinus communis)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 动物全基因组(WGS)分析流程
毅硕Sentieon | 猪(sus scrofa)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 鸡(Gallus gallus)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 家鼠(Mus musculus)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 家犬(canis lupus familiaris)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 东方蜜蜂(Apis cerana)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 电鳗(Electrophorus electricus)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 红隼(Falco tinnunculus)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 家猫(Felis catus)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 尼罗罗非鱼(Oreochromis niloticus)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 狮子(Panthera leo)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 东北虎(panthera tigris altaica)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 黑猩猩(pan troglodytes)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 中国鳖(pelodiscus sinensis)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 褐家鼠(rattus norvegicus)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 家牛(Bos taurus)全基因WGS分析流程
毅硕Sentieon | 虎河豚(takifugu rubripes)全基因WGS分析流程
毅硕Sentieon | 人类(Homo sapiens)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 狮尾狒(theropithecus gelada)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon | 草鱼(Ctenopharyngodon idella)全基因组WGS分析流程
毅硕Sentieon文献解读
Sentieon文献解读 | Population Sequencing
Sentieon文献解读 | Agrigenomics
Sentieon | Agrigenomics-泛基因组揭示小麦结构变异与栖息地及育种的关联
Sentieon文献解读 | Genetic Disease
Sentieon文献解读 | Tumor Sequencing
Sentieon文献解读 | Benchmark and Method Study
Sentieon文献解读 | Long Read Sequencing
Sentieon文献解读 | Clinical Trial
Sentieon文献解读 | Epidemiology
Sentieon文献解读 | Gene Editing
Sentieon文献解读 | Liquid Biopsy
Sentieon | TNscope 分析流程详解
Sentieon | TNscope WES Panel 分析流程详解
-
+
home
Sentieon | DNAscope 核心家系(trio) WES 分析全流程详解
# 一、背景介绍 在罕见病诊断中,单样本外显子组测序(WES)常面临“瓶颈”——由于缺乏家系成员对照,难以判断变异是否呈现家系共分离,导致致病变异的筛选如同“大海捞针”,且对于复杂遗传模式的漏检率较高。 而核心家系分析(Trio-WES:先证者 + 生物学父母联合测序)恰好破解了这一难题:通过父母与孩子序列的实时比对,若父母健康且不携带相关致病基因,可迅速排除大量良性遗传变异,将候选范围精准锁定在极少数潜在致病位点内。 研究数据充分印证了 WES 模式下家系分析的临床价值:进行 Trio-WES 分析的患儿,其确诊率显著高于单样本分析;由于 WES 具有更高的测序深度(通常 >100X),在核心家系模式下能更灵敏地捕捉到编码区内微小的新生突变(De novo Mutation)和复合杂合突变。平均而言,家系分析向临床团队报告的候选变异数量远少于单样本模式,极大地降低了人工审核的负担。 Sentieon 的 DNAscope 流程基于预训练的机器学习模型,在 WES 复杂捕获区域的单样本调用准确度上已实现大幅提升。针对 WES 核心家系分析的特殊需求,Sentieon 进一步推出了专属流程,利用高深度数据优势,聚焦于孟德尔错误(ME)与新生突变(De novo Mutation)的精准识别。该流程通过优化的算法逻辑,有效过滤了 WES 捕获不均导致的假阳性,进一步降低漏检,为罕见病的临床分子诊断提供更高效、更经济的数据支撑。 * * * # 二、适用场景 * 研究对象:疑似罕见病患者及其父母(核心家系); * 数据类型:全外显子组测序(WES)数据,支持 PCR-free 和 PCR 建库样本; * 核心目标:判断变异的家系共分离模式;精准识别孟德尔错误(ME)位点;高效筛选对诊断至关重要的新生突变。 * * * # 三、环境必备 * 软件授权:Sentieon license * 软件下载: * https://ftp.insvast.com/user/Sentieon/release/sentieon-genomics-202503.03.tar.gz (适配 X86 架构 CPU 服务器,例如 Intel、 AMD、 曙光) * https://ftp.insvast.com/user/Sentieon/release/arm-sentieon-genomics-202503.03.tar.gz (适配 ARM 架构 CPU 服务器, 例如华为鲲鹏、 阿里倚天、 Ampere) * 软件下载链接需用户名与密码,用户名:insvast;密码: Ins@1234 * 模型下载:https://github.com/Sentieon/sentieon-models/ * * * # 四、分析流程 该分析流程是一个针对家系 WES 数据的变异检测流程,核心目标是准确识别先证者的 de novo 突变(新突变)。流程通过 “初步检测→联合调用→筛选孟德尔不兼容变异→重调用优化→二次联合调用” 的步骤,逐步提高变异检测的准确性,最终输出高质量的家系变异结果,尤其是新突变的注释信息。  该流程用于处理家系(trio,通常指先证者及其父母)全外显子组测序(WES)数据的变异检测流程,使用 sentieon 工具和 bcftools 进行分析。核心分析流程如下: ## 步骤1:单样本变异检测 使用 DNAscope 对家系每个样本进行变异检测,生成 GVCF。 ``` # 先证者变异检测 sentieon-cli dnascope -r FASTA --r1-fastq P_FQ1 --r2-fastq P_FQ2 \ --readgroups "@RG\tID:proband_name\tSM:proband_name\tPL:platform" \ -m MODEL_BUNDLE -d dbsnp --duplicate-marking rmdup \ --assay WES --gvcf --skip-svs --skip-multiqc --pcr-free proband_name.vcf.gz # 父亲/母亲变异检测(命令结构与先证者一致,仅样本名和输入文件不同) sentieon-cli dnascope ... father_name.vcf.gz sentieon-cli dnascope ... mother_name.vcf.gz ``` ## 步骤 2:家系联合基因型进行初轮联合变异检测 使用 GVCFtyper 合并三人 GVCF 生成初步联合 VCF。 ``` sentieon driver -r FASTA --algo GVCFtyper \ -v proband_name.g.vcf.gz -v father_name.g.vcf.gz -v mother_name.g.vcf.gz \ joint-call_pass1.vcf.gz ``` ## 步骤 3:突变 De Novo 突变检测 检测家系中的 de novo 突变,添加 DNM 标签标记新发突变位点。 ``` bcftools +trio-dnm2 -p proband_name,father_name,mother_name -X GRCh38 \ -o trio-dnm2.output.vcf.gz -Oz --use-NAIVE joint-call_pass1.vcf.gz ``` ## 步骤 4:变异位点分类 对变异位点进行分类,筛选孟德尔兼容或不兼容变异。 ``` # 筛选孟德尔不兼容变异(可能是DNM) bcftools view -i "FMT/DNM[0]==1" trio-dnm2.output.vcf.gz | \ sentieon util vcfconvert - mendelian-incompatible.vcf.gz # 筛选孟德尔兼容变异(符合遗传规律) bcftools view -e "FMT/DNM[0]==1" trio-dnm2.output.vcf.gz | \ sentieon util vcfconvert - mendelian-compatible.vcf.gz ``` ## 步骤 5:重召回孟德尔不兼容变异 ``` sentieon driver -r FASTA \ -i proband_name_deduped.cram -i father_name_deduped.cram -i mother_name_deduped.cram \ --algo DNAscope --pcr_indel_model none --given mendelian-incompatible.vcf.gz \ --model MODEL_BUNDLE/dnascope.model mendelian-incompatible.recalled.vcf.gz ``` ## 步骤 6:筛选高置信度重召回结果 ``` bcftools view -e "QUAL<qual_thresh" mendelian-incompatible.recalled.vcf.gz | \ sentieon util vcfconvert - mendelian-incompatible.recalled.highconf.vcf.gz ``` ## 步骤 7:合并结果并进行第二次联合调用 ``` bcftools concat --allow-overlaps mendelian-compatible.vcf.gz \ mendelian-incompatible.recalled.highconf.vcf.gz | \ bcftools sort - | sentieon util vcfconvert - joint-call_pass2.vcf.gz ``` ## 步骤 8:第二次检测 de novo 突变并建立索引 ``` bcftools +trio-dnm2 -p proband_name,father_name,mother_name -X GRCh38 \ -o trio-dnm2.joint-call_pass2.vcf.gz -Oz --use-NAIVE joint-call_pass2.vcf.gz sentieon util vcfindex trio-dnm2.joint-call_pass2.vcf.gz ``` **参数说明** * `FASTA`:参考基因组 FASTA 文件路径,需与比对阶段使用的参考一致。如 hg38 的 hs38.fa。 * `dbsnp`:dbSNP 数据库 VCF 文件路径,用于变异注释。如 hg38 的 dbsnp138 版本。 * `MODEL_BUNDLE`:DNAscope 预训练模型路径,需使用与数据平台匹配的模型。如 Illumina WGS 的 2.0 版本。 * `--readgroups`:读组信息,需包含 ID(Read Group ID,读组ID)、SM(样本名)、PL(测序平台,如 Illumina); * `--duplicate-marking`:重复序列处理:rmdup 为去除重复,none 为不处理(预处理阶段建议 rmdup ); **结果说明** triodnm2.joint-call_pass2.vcf.gz 是整个家系(trio)变异检测流程的核心输出文件之一,专门用于存储经过二次优化后筛选出的 de novo 突变(DNM,即先证者中出现、父母均未携带的新突变) 信息。该文件遵循 VCF 标准格式,是基因组变异数据的通用存储格式。其中家系 DNM 相关注释如下: (1)##FORMAT=<ID=DNM,Number=1,Type=Integer,Description="De novo mutation status (1=de novo, 0=not de novo, .=unknown)">:关键字段,标记该变异是否为 DNM(1 表示是 DNM)。 (2)##INFO=<ID=TRIO_STATUS,Number=1,Type=String,Description="Relationship status in trio (e.g., mendelian_compatible, de_novo)">:描述变异在家系中的遗传状态(如 “de_novo” 表示符合 DNM 特征)。 **Sentieon DNAscope trio-WES 流程 github 地址:** * https://github.com/Insvast/bioinformatics/tree/main/WES-trio-test * * * # 五、DNAscope 核心家系设计优势 Sentieon 核心家系流程的准确性依赖以下核心设计: 1. **双轮迭代策略:** PASS 1 通过联合调用筛选候选 ME 位点,PASS 2 通过多样本共比对(co-alignment)重新召回,修正单样本漏检导致的假阳性; 2. **真集训练与验证:** 模型训练与流程验证采用 HG002 T2T(端到端)基因组真集及泛基因组样本,确保对复杂区域变异的准确识别; 3. **样本适配性:** 同时支持 PCR-free 与 PCR 建库样本,通过动态参数调整(如--pcr-free、qual_thresh)适配不同实验条件。 * * * # 六、实际运行测试 本次测试将下载 GIAB 的 HG002、HG003、HG004 WES项目数据,从而进行 dnascope 分析查看实际的运行效率。 ## 1. 测试项目使用配置 * CPU 为 Intel(R) Xeon(R) Platinum 8358P CPU @ 2.60GHz 64 核心 * 内存为 512GB DDR4 * 系统为 Ubuntu 22.04.3 LTS ## 2. 分析结果评测 为了对流程准确率进⾏评测,我们分析了瓶中基因组核⼼家系标准品 HG002、HG003、HG004 的 100X MGI WES 的 PCR-free 建库数据集。 将检测得到的结果和真集中的 ME 进行比较,计算准确率。 如下图所示,几乎无漏检的存在,假阳性也被控制在⼀个合理的区间。  * TP:真阳结果,在样本最终MElist中被列出,同时也存在于真集的MElist 。 * FN:假阴结果,存在于真集中但是不在样本的最终MElist,这暗示该位点在先证者数据中被漏检或者错检。 * FP:假阳结果,存在于样本的最终MElist 但是不在真集中,这暗示该位点在先证者数据中就是假阳性或者在⽗⺟样本中漏检。 ## 3. Bam 质控统计  ## 4. 分析内存统计  ## 5. 分析时间统计 **步骤一耗时如下所示:**  3 个样本一起做家系分析(步骤二到步骤八)共耗时 3.6 分钟。 同时提交步骤1,待其完成后再提交步骤 2 至步骤 8,全流程能在 12 分钟内完成 100X 的 WES 样本的家系分析,内存最大占用为 21.69 G。 目前,Sentieon 核心家系分析流程已集成至最新版 Sentieon 软件包,已授权用户可直接调用脚本运行;若您尚未成为 Sentieon 用户,欢迎后台联系试用。 * * *
chsnp
April 22, 2026, 3:35 p.m.
Forward
Favorites
Last
Next
Scan the QR Code
Copy link
Scan the QR code to share.
Copy link
Markdown file
Word document
PDF document
PDF document (print)
share
link
type
password
Update password
Validity period